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        細胞復(fù)蘇實驗操作步驟,你了解嗎?

        2022-06-17 瀏覽次數(shù):1245

        細胞復(fù)蘇的原則:慢凍速融,必須將凍存在-196℃液氮中的細胞快速融化至37℃,使細胞外凍存時的冰晶迅速融化,避免冰晶緩慢融化時進入細胞形成再結(jié)晶,對細胞造成損害。

        復(fù)蘇步驟

        一.實驗前準備:

        將水浴鍋預(yù)熱至37℃。

        細胞實驗室進行常規(guī)消毒,用75%酒精擦拭并且使用紫外線照射40min的超凈工作臺臺面。

        在超凈工作臺中按次序擺放好消過毒的離心管、吸管、培養(yǎng)瓶等。

        二.取出凍存管:

        根據(jù)細胞凍存記錄按標簽找到所需細胞的編號。

        從液氮罐中取出細胞盒,取出所需的細胞,同時核對管外的編號。

        三.迅速解凍:

        迅速將凍存管投入到已經(jīng)預(yù)熱的水浴鍋中解凍,并要不斷地搖動,使管中的液體迅速融化。

        約1-2min后凍存管內(nèi)液體*溶解,取出用酒精棉球擦拭凍存管的外壁,再拿入超凈臺內(nèi)。

        四.平衡離心:

        用架盤天平平衡后,放入離心機中1000r/min,離心5min。

        五.制備細胞懸液:

        吸棄上清液。

        向離心管內(nèi)加入10ml預(yù)熱的培養(yǎng)液,吹打制成細胞懸液。

        用培養(yǎng)液懸液混懸沉淀細胞,調(diào)整細胞濃度,放培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

        六.細胞計數(shù):

        細胞濃度以5×105/ml為宜。

        七.培養(yǎng)細胞:

        將符合細胞計數(shù)要求的細胞懸液分裝入培養(yǎng)瓶內(nèi),將培養(yǎng)瓶放入37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)2-4小時(或者24-48小時)后換液繼續(xù)培養(yǎng),換液的時間由細胞情況而定。

        八. 記錄復(fù)蘇日期:

        細胞凍存和復(fù)蘇是細胞培養(yǎng)技術(shù)里面容易出問題的部分,因此必須注意以下幾點~

        注意無菌操作。

        取細胞的過程中可能會接觸液氮,一定注意帶好防凍手套,護目鏡。

        此項尤為重要,如果凍存管密封不嚴,細胞凍存管可能漏入液氮,解凍時,在水浴中搖晃,凍存管中的氣溫急劇上升,可導(dǎo)致爆炸,所以,一定要戴保護眼鏡和手套,復(fù)蘇過程中應(yīng)蓋上恒溫水浴鍋的蓋。

        應(yīng)在1-2min內(nèi)使凍存液*融化。如果復(fù)溫速度太慢,則會造成細胞損傷。另外,細胞復(fù)蘇后的操作Hao在4℃冰浴中進行,以減少冷凍保護劑對細胞的毒性。

        細胞復(fù)蘇過程中,升溫的速率要大,把從液氮取出的細胞在短的時間內(nèi)放入水浴鍋。

        離心前須加入少量培養(yǎng)液。細胞解凍后二甲基亞砜濃度較高,注意加入少量培養(yǎng)液可稀釋其濃度,以減少對細胞的損傷。

        細胞貼壁少的問題:教科書中說明凍存細胞解凍時1ml細胞液要加10ml-15ml培養(yǎng)液,經(jīng)驗總結(jié),培養(yǎng)基越少細胞越容易貼附。

        復(fù)蘇細胞分裝的問題:復(fù)蘇1管細胞一般根據(jù)情況可分裝到1-2只培養(yǎng)瓶中,分裝過多,細胞濃度過低,不利于細胞的貼壁。

        加培養(yǎng)基的量放入問題:這個量的多少的把握主要涉及到的問題是DMSO的濃度,從如果加培養(yǎng)基的太少,DMSO的濃度就會比較大,就會影響細胞生長,從以前的資料來看,DMSO的濃度在小于0.5%的時候?qū)σ话慵毎麤]有什么影響。還有一個說法是1%。所以如果凍存液的濃度是10%DMSO,那么加10ml以上的培養(yǎng)基就恰好稀釋到了無害濃度。    

        初學(xué)者易犯的錯誤:

        水浴鍋未預(yù)熱或者未預(yù)熱到37℃直接融化。

        水浴鍋內(nèi)凍存管太多,導(dǎo)致傳熱不佳,使融化時間延長。

        離心前忘記平衡,導(dǎo)致離心機損壞和細胞丟失。

        一次復(fù)蘇細胞種類過多,忘記更換吸頭和吸管,導(dǎo)致細胞交叉污染。

         解凍后的細胞要用和以前一樣的培養(yǎng)液和血清。因為每一種細胞都有自己特定的,并且已經(jīng)熟悉了的生長環(huán)境。突然使用不一樣的培養(yǎng)液和血清,會造成細胞生長不良,甚至死亡,像水土不服一樣。

        結(jié)果分析:

        判斷細胞復(fù)蘇成功與否,需要看復(fù)蘇后細胞貼壁率及細胞存活率(細胞存活率將凍存管內(nèi)剩余的細胞,用臺盼藍染色法檢測復(fù)蘇細胞的存活率。呈藍色的細胞為死細胞,活細胞不著色。用細胞計數(shù)板和計數(shù)器計數(shù)細胞,得出細胞存活率)。如果復(fù)蘇后95%以上的細胞貼壁,而且細胞的活性好,這就說明細胞復(fù)蘇的過程沒有問題。復(fù)蘇的細胞恢復(fù)到正常生長,達到正常的生長特性(比如細胞群體倍增時間等)后要再凍存以補充細胞儲存數(shù)量。

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