間質干細胞的表面抗原和培養原理

間質干細胞的表面抗原

通過流式細胞儀分析，間充質干細胞特異性表面抗原有：SH2、SH3、 CD29、CD44、CD71、CD90、CD106、CD120a、CD124。

BMSC：是骨髓中除HSC 以外的非造血性干細胞，骨髓中絕大多數是HSC，BMSC 只占骨髓有核細胞的0.001%～0.01% 。因此鑒定BMSC 的方法是在骨髓的干細胞中排除HSC——BMSC：CD45-、CD34-、CD29+、 CD14+/ HSC：CD34+。

間質干細胞的培養原理概述

間質干細胞（mesenchymal stem cell，MSC）是一群中胚層來源的具有自我更新和多向分化潛能的多能干細胞，在適宜的培養條件下可分化成多種組織細胞，包括成骨細胞、軟骨細胞、肌肉細胞、脂肪細胞等。

間質干細胞最早是從骨髓中分離得到的，正常情況下，它在骨髓中的比例非常低，僅占單核細胞的1/105 ~1/104 。骨髓中單個核細胞包括淋巴細胞和單核細胞，其體積、形態和密度與其他細胞不同，紅細胞和多核白細胞密度較大，為1.090 g/ml左右，而淋巴細胞和單核細胞密度為1.075~1.090 g/ml，血小板為1.030~1.035 g/ml。為此利用一種密度介于1.075~1.092 g/ml之間而近于等滲的溶液（分層液）進行密度梯度離心，使一定密度的細胞按相應密度梯度分布，從而將各種血細胞加以分離。常用的分層液有Ficoll和Percoll兩種。

在骨髓的原代培養物中，除了貼壁生長的成纖維細胞樣的間質干細胞外，還混雜著一些巨噬細胞、單核細胞、造血細胞及紅細胞等，要得到較均一的間質干細胞，必須除去其他細胞。根據其他細胞的特性，可采用不同的方式排除它們。對于紅細胞，因其不貼壁，可通過換液除去。對于貼壁的單核巨噬細胞，可根據其黏附能力的不同，通過調整Trypsin/EDTA 的消化時間，保證間質干細胞在短暫的作用時間內與塑料培養瓶壁分離，而巨噬細胞、單核細胞、造血細胞等仍貼附于培養瓶壁，從而使間質干細胞與其他的貼壁細胞得到分離。

在傳代培養中，接種密度是影響體外培養間質干細胞增殖潛能的重要因素。低密度接種時，間質干細胞的增殖能力明顯提高，而誘導細胞分化時則需要較高的細胞密度，這可能與分化時細胞與細胞間的相互作用有關。而在培養過程中，若細胞過度融合會促進其分化趨向，故要保持干細胞未分化狀態，要及時傳代。